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la concentrazione di induttore iptg, maggiore è il migliore? 2017-10-13 17:45:06

negli esperimenti di biologia molecolare, induttore iptg per espressione proteica non è nuovo a tutti. è una mimica molecolare di allolattosi che innesca la trascrizione dell'operone lac e induce un'espressione proteica in cui il gene è sotto il controllo dell'operone lac.


ma nell'uso di iptg ( isopropil β-d-1-tiogalattopiranoside ), è sempre maggiore la concentrazione?


in primo luogo, esaminiamo il principio induttivo di iptg.


la stragrande maggioranza dei geni dei prokaryotes sono disposti in un cluster secondo relazioni funzionali e sono concentrate sui cromosomi per formare un'unità di trascrizione - l'operone. operone lattosio di e. Il coli contiene tre geni strutturali z, y e a, che codificano rispettivamente β-galattosidasi, permeasi e transacetilasi. inoltre, c'è il gene regolatore: sequenza di manipolazione (operatore), inizio sequenza p (promotore); mentre i (codificante repressore lac) non appartiene all'operone lattosio.


il repressore lac è una proteina strutturale quaternaria con quattro sottosistenze identiche e ha un sito che si lega all'induttore. in assenza di lattosio, l'operone lac è in uno stato repressivo e il repressore lac si lega all'operatore (o), impedendo la polimerasi di rna a legarsi alla sequenza p, impedendo il percorso trascrizionale, inibendo così l'iniziazione della trascrizione. quando l'induttore (come ad esempio reagente iptg ) è presente, l'induttore si lega alla proteina del repressore e la modifica la conformazione, causando che il repressore si dissociasse dall'operatore (o), la polimerasi di rna non è più ostacolata, il promotore p inizia la trascrizione.

in questo sistema operon, l'induttore reale non è il lattosio. il lattosio entra in cellule ed è catalizzato da β-galattosidasi in induttore allolattosio-fisiologico. nell'esperimento, iptg ( isopropil glucosinolati galattosio glucoside ) sono ampiamente usati perché è un induttore forte che non è influenzato dal metabolismo batterico ed è molto stabile.


poi torniamo alla domanda precedente: la concentrazione di iptg, è più alta è migliore?


la risposta non è realmente!


(1) iptg ha una certa tossicità per le cellule, alta concentrazione potrebbe uccidere le cellule;

(2) in generale, speriamo che la proteina solubile possa esprimere il più possibile, mentre un grande numero di inclusione si formerà se la concentrazione di iptg è troppo elevata, allora la quantità di proteina solubile è ridotta.


quindi, la concentrazione più appropriata di iptg non è spesso elevata.


il livello di espressione del gene target è influenzato da fattori quali la concentrazione dell'induttore, la temperatura di induzione, il tempo di induzione e così via. quindi, nell'espressione e nella purificazione di una proteina sconosciuta, è meglio studiare i fattori rilevanti, compresa la concentrazione dell'induttore iptg ( cas 367-93-1 ), al fine di selezionare le condizioni appropriate per ottenere i migliori risultati sperimentali.



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